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一管化 RT Mix with DNase MF1801

FluorTrace

产品货号:MF1801 储存条件:-20 ℃

产品介绍

1 产品基本信息

产品名称(中文):一管化 RT Mix with DNase

产品名称(英文):All-in-One RT Mix with DNase

产品编号:MF1801

2 规格或纯度

20 μL×20 T, 20 μL×100 T

组分

20 μL × 20 T

20 μL × 100 T

A. 5× RT All-in-One Mix

80 µL

2 × 200 µL

B. DNase(脱氧核糖核酸酶)

20 µL

100 µL

C. RNase-Free Water(无 RNA 酶水)

400 µL

2 × 1 mL

注:5× RT All-in-One Mix 包含逆转录酶、RNA 酶抑制剂、dNTPs(脱氧核苷三磷酸)、Oligo (dT)₂₀VN 和随机引物等。

3 产品介绍

产品简介:

本产品构建了便捷的 RNA 合成 cDNA 系统,集成了第一链 cDNA 合成所需全套试剂,仅需添加 RNA 模板与水,即可启动逆转录反应,操作流程简单高效。合成的 cDNA 主要用于 qPCR 反应。

该预混液采用高效热敏感 DNase,高温下迅速不可逆失活,因此仅需一次加样便能在同一管内完成基因组 DNA 污染去除和逆转录反应。相较传统 DNase I 使用方法,无需额外添加 EDTA 失活,既降低了对 RNA 模板的损害和 RNase 污染风险,又有效节省了实验时间。

产品特点:

l迅速高效:特制高效 DNase,反转速度快,15 min 内最长可获得 12 kb 大小的 cDNA;

l操作简便:含有第一链 cDNA 合成所需的全部试剂、仅需一次加样且“一管化”操作。

适用范围:

转录组研究

4 储存与运输

储存条件:-20 ℃保存,避免反复冻融,以保证试剂活性。

运输条件:冰袋运输,确保运输过程中温度维持在低温环境,防止试剂变质。

5 使用方法(仅供参考)

反应体系配制:在冰上配制 20 μL 反应体系,各组分添加体积与要求如下

反应组分

体积 / 用量

5× RT All-in-One Mix

4 μL

DNase

1 μL

模板 RNA

50 ng~1 μg(推荐使用高质量 RNA,避免降解或杂质污染)

RNase-Free Water

加至 20 μL(补足体系体积)

操作步骤

(1) 按照上述表格在冰上依次添加各反应组分,避免在室温下长时间放置试剂,防止 RNA 酶污染或试剂活性降低。

(2) 轻柔混匀各组分后,进行瞬时离心(短时间高速离心),使管内液体集中在管底,避免管壁残留导致反应体系不均。

(3) 将离心后的反应管放入 PCR 仪,按照以下条件设置反应程序:

l第一步:37 ℃孵育 2 min,目的是去除基因组 DNA 污染,避免其对后续 cDNA 合成与 qPCR 结果产生干扰。

l第二步:55 ℃孵育 15 min,启动逆转录反应,合成第一链 cDNA。

l第三步:85 ℃孵育 5 min,使热敏感 DNase 不可逆失活,同时终止逆转录反应,防止其对后续实验造成影响。

(4) 反应结束后,将获得的 cDNA 产物立即保存于 - 20 ℃长期储存;若需马上进行后续 qPCR 实验,可暂放于冰上短期保存。

6 注意事项

lRNA 模板的纯度和完整性是逆转录反应成功的关键。在逆转录操作中,若模板中混杂易导致 RNA 降解的杂质(如蛋白、EDTA、酚等),会抑制逆转录酶活性,进而影响逆转录效果,需严格控制 RNA 模板质量。

l后续 qPCR 实验中,逆转录产物的加量应不超过 qPCR 体系终体积的 1/10。若加量过多,会导致体系中残留的逆转录试剂(如 DNase、dNTPs)干扰 qPCR 反应,影响定量准确性。

l本产品的预混液不适用于 miRNA 等小 RNA 模板。miRNA 长度较短(通常 20~24 nt),预混液中的 Oligo (dT)₂₀VN 和随机引物无法有效结合,需选择专门针对小 RNA 的逆转录试剂盒。

lcDNA 产物仅适用于 qPCR 反应,不适用于克隆等下游实验的长片段 PCR 扩增。若需进行长片段扩增或克隆,需选择具备高保真度且适用于长片段合成的逆转录试剂盒。

l本产品仅限于科研用途,不得用于临床诊断或其他非科研领域,且不得存放于普通住宅内,需存放在实验室专用试剂储存区。

l为了您的安全和健康,操作过程中请遵循所在实验室的常规安全规范,如佩戴一次性手套、护目镜,避免试剂接触皮肤与黏膜,若不慎接触,需立即用大量清水冲洗。

技术问答

逆转录产物出现非特异性条带,该如何处理?

    ● 引物特异性差:预混液中的通用引物(Oligo (dT)₂₀VN 或随机引物)与 RNA 模板中的非目的基因序列结合,导致非特异性逆转录。解决方法:重新设计特异性更高的引物(如基因特异性引物),替换预混液中的通用引物,减少非特异性结合。

    ● 模板中存在杂质或基因组 DNA 污染:即使经过 37 ℃ DNase 处理,若模板初始基因组 DNA 污染严重或 DNase 活性不足,仍可能残留基因组 DNA,后续 PCR 扩增时会产生非特异性条带。解决方法:对 RNA 模板进行二次 DNase I 处理(选择非热敏感 DNase,处理后用 EDTA 失活并纯化 RNA),或在 qPCR 实验中设计跨内含子的引物,区分 cDNA 与基因组 DNA 扩增产物。

    ● PCR 扩增条件过于宽松:后续 qPCR 反应中退火温度过低、循环次数过多,导致非特异性扩增。解决方法:优化 PCR 扩增条件,如适当提高退火温度(根据引物 Tm 值调整)、减少循环次数(如从 40 次循环减少至 35 次),同时设置阴性对照(如无模板对照)排除污染干扰。


逆转录产物无条带或条带很弱,是什么原因?如何解决?

    ● RNA 模板质量不佳:存在 RNA 降解(如操作过程中未严格防 RNase 污染)或纯度不够(如残留蛋白、EDTA、酚等杂质),影响逆转录酶活性与反应效率。解决方法:重新提取高质量 RNA,提取过程中严格使用 RNase-Free 耗材与试剂,纯化后检测 RNA 完整性(如琼脂糖凝胶电泳)与纯度(如 Nanodrop 检测 OD 值)。

    ● 引物设计不合理:预混液中的 Oligo (dT)₂₀VN 或随机引物无法有效结合 RNA 模板(如模板结构特殊或引物与模板存在错配)。解决方法:根据 RNA 模板类型优化引物,若为特殊结构 RNA,可尝试设计特异性引物替代预混液中的通用引物。

    ● 逆转录酶活性降低或失活:试剂储存不当(如反复冻融、储存温度不符合要求)导致逆转录酶活性下降。解决方法:更换新的 All-in-One RT Mix with DNase 试剂,严格按照 - 20 ℃保存要求储存,避免反复冻融。

    ● 反应体系添加错误或量不足:如漏加某一组分(如 DNase、5× RT All-in-One Mix)或模板 RNA 用量过少。解决方法:重新核对反应体系配方,确保各组分添加完整且用量符合要求,推荐按照说明书推荐的 50 ng~1 μg 范围添加模板 RNA。


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